fizyczne usunięcie lub zniszczenie

Kiedy widzisz kilka mszyc na swoich cenionych różach, pierwszym instynktem większości ogrodników jest po prostu je zgnieść – lub przynajmniej je zmyć. Jeśli miałeś szczęście dostrzec pierwszych najeźdźców i jeśli uderzasz ich codziennie przez cały sezon, takie podejście może zapewnić odpowiednią, jeśli raczej czasochłonną, kontrolę. Jednak może to być trochę trudne na bardzo ciernistych różach, takich jak Rosa rugosa. Lepszym rozwiązaniem jest strącenie ich z instalacji za pomocą strumienia wody pod wysokim ciśnieniem. W przypadku dużych ciernistych krzewów róż jest to czasami najlepsze podejście, bez wad kontroli chemicznej. Można użyć węża ogrodowego lub, bardziej efektywnie, można zamontować wysokociśnieniowe urządzenie natryskowe znane jako „różdżka wodna”. Mszyce strącone z rośliny w ten sposób są zwykle tak uszkodzone, że nie są w stanie kontynuować karmienia lub mogą być zjadane przez drapieżniki naziemne, takie jak chrząszcze karabidziaste.

kolejną zaletą tej metody jest to, że większość owadów drapieżnych mszyc (patrz poniżej na zachowanie naturalnych wrogów) jest nieco bardziej odporna na to leczenie i po prostu wspina się z powrotem na roślinę, aby zjeść posiłek na ocalałych.

kontrola biologiczna

zamiast próbować samodzielnie usuwać mszyce, bardziej sensowne jest „rekrutowanie” naturalnych wrogów mszyc różanych, którzy pomogą Ci w tym zadaniu. Pamiętaj, że celem tego podejścia nie jest pozbycie się każdej ostatniej mszycy, to po prostu utrzymanie ich na wystarczająco niskim poziomie, aby nie uszkodzić roślin ani nie zniekształcić ich wyglądu.

istnieje kilka wariantów tego podejścia:

• ochrona kontrola biologiczna

  celem jest ochrona i wspieranie istniejących naturalnych wrogów w środowisku. W środowisku ogrodowym niektóre gatunki ptaków są ważnymi drapieżnikami mszyc. Niebieski CYT, na przykład, wiadomo, że przed mszycami róży (patrz mszyca róża drapieżnictwo przez niebieskie cyce). Zapewnienie skrzynek lęgowych dla blue tits jest bardzo skutecznym sposobem na zwiększenie drapieżnictwa mszyc przez blue tits, ponieważ blue tits żywią mszyce preferencyjnie niż ich starsze pisklęta.

  

  kolejną dobrą perspektywą dla kontroli mszycy różanej jest zachęcenie do owinięcia przez muchówki (Syrphidae) (Natskova, 1973). Ich larwy są żarłocznymi drapieżnikami mszyc różanych (patrz zdjęcie poniżej). Zobacz też mszyce na róży z larwą hoverfly.

  

  Sadeghi & Gilbert (2000) odkrył, że Macrosiphum rosae jest preferowanym żywicielem dwóch drapieżnych muchówek, Episyrphus balteatus i Syrphus ribesii. Dorosłe muchówki potrzebują nektaru dla energii, a białko z pyłku dla dojrzewania płciowego i rozwoju jaja. Hickman& wratten (1996) odkrył, że sadzenie niebieskiej wrotyczy, dobrego źródła nektaru i pyłku dla muchówek, wraz z uprawami zbóż zwiększyło biologiczną kontrolę mszyc przez larwy muchówek na polach zbożowych. Nie ma jednak gwarancji, że drapieżniki faktycznie przemieszczają się z jednej rośliny do drugiej. Frere et al. (2007) stwierdził, że pasy krzewu róży (Rosa rugosa) nie wpływają na budowanie populacji mszyc i ich naturalnych wrogów w sąsiednich siedliskach zbożowych.

• w niewoli można hodować drapieżniki lub parazytoidy, a następnie wielokrotnie wypuszczać je w dużych ilościach w celu pochłonięcia mszyc. Markkula i in. (1979) wykazał w Finlandii, że zalewowe uwolnienia Aphidoletes aphidimyza utrzymywały krzewy róż przez całe lato wolne od mszyc. Ferran et al. (1996) wypuścił larwy coccinellids Harmonia axyridis do łóżek różowych porażonych Macrosiphum rosae na placach miejskich w Paryżu. Populacja mszyc ustabilizowała się lub zmniejszyła po uwolnieniu drapieżnika. Wydajność była porównywalna do uzyskanej przy użyciu zabiegów chemicznych na sąsiednich łóżkach różanych.

  pierwsze próby wykorzystania larw coccinellids Coccinella septempunctata i Adalia bipunctata do kontrolowania Macrosiphum rosae w małych szklarniach nie powiodły się (Hamalainen et al., 1977), ponieważ drapieżniki nie pozostały na roślinach róż. Późniejsze prace koncentrowały się bardziej na wykorzystaniu pasożytniczych OS. Aphidius ervi jest obecnie uważany za skuteczny w zwalczaniu biologicznym zarówno Macrosiphum rosae, jak i Macrosiphum euphorbiae (zob. systemy biologiczne Kopperta). Aphelinus abdominalis jest również dobry, ale potrzebuje trochę więcej ciepła. Snyder et al. (2004) wykazał, że drapieżna Coccinellid Harmonia axyridis może uzupełniać biokontrolę mszycy przez parazytoid Aphelinus asychis, zamiast zakłócać ją poprzez drapieżnictwo wewnątrzgałkowe. Innymi słowy, drapieżniki te rzadko zjadają te parazytoidy.

  w Fargro (Wielka Brytania), Biobest (Belgia) i Koppert (Holandia) można nabyć różne rodzaje naturalnych wrogów.

• Klasyczna kontrola biologiczna

  to miejsce, w którym naturalni wrogowie szkodnika są wprowadzani na nowy obszar, gdzie nie występują naturalnie. Intencją jest ustanowienie naturalnych wrogów i utrzymanie długotrwałej, zrównoważonej kontroli. Macrosiphum rosae został pierwotnie wprowadzony do Australii bez naturalnych wrogów w czasie europejskiego osadnictwa i szybko stał się głównym szkodnikiem. W 1990 roku specyficzny parazytoid Aphidius rosae (patrz pierwsze zdjęcie poniżej) z Europy został wprowadzony do Australii Południowej w ramach klasycznego programu biologicznego.

  

  parazytoid wkrótce się ugruntował i od tego czasu rozprzestrzenił się na co najmniej Nową Południową Walię i Australijskie Terytorium Stołeczne, gdzie pasożytowane mumie (patrz drugie zdjęcie powyżej) są obecnie powszechne wiosną. (Waterhouse & Sands, 2001) mszyce nie osiągają już tego samego poziomu szkodliwości wiosną i zanikają wcześniej. Jednak mogą pojawić się ponownie jesienią.

  Klasyczna kontrola biologiczna jest zwykle przeprowadzana przez władze rządowe.

Kontrola chemiczna

teraz przejdziemy do kontroli chemicznej, w ramach której obejmujemy zarówno chemikalia „organiczne”, jak i syntetyczne. Najmniej szkodliwymi insektycydami dla środowiska są tak zwane „organiczne” lub „naturalne” środki owadobójcze, w tym pyretrum (np. py Spray Garden Insect Killer), oleje roślinne (np. Vita Organic Pest & zwalczanie chorób) i kwasy tłuszczowe (mydła owadobójcze, np. Doff Greenfly i Blackfly Killer). Są one mniej szkodliwe dla środowiska niż syntetyczne środki owadobójcze i zalecamy je, jeśli inne metody nie są odpowiednie lub wykonalne. Ale bardzo prawdopodobne, że nadal odpychają (a czasami zabijają) mszyce naturalnych wrogów, więc traktowane krzewy róż są bardziej podatne na reinfestację.

drugim podejściem jest stosowanie syntetycznych środków owadobójczych, z których dwa typy mogą być dostępne dla ogrodnika. Pierwszym z nich są syntetyczne pyretroidy, takie jak deltametryna (np. Bayer Sprayday Greenfly Killer) i lambda-cyhalotryna (np. Westland Resolva Bug Killer). Są to środki owadobójcze o szerokim spektrum działania o niskiej toksyczności dla ssaków, które, w przeciwieństwie do naturalnej pyretryny, pozostają aktywne przez kilka tygodni. Ale zabiją także naturalnych wrogów mszyc różanych, więc nie możemy ich polecić ogrodnikom.

drugą główną klasą środków owadobójczych stosowanych w ogrodach są pestycydy neonitynoidowe. Należą do nich tiaklopryd (np. Bayer Provado Ultimate Bug Killer) i acetamipryd (np. Bug Clear Ultra, Rose Clear Ultra). Dwa inne pestycydy neonicytynoidowe (imidaklopryd i tiametoksam) zostały wycofane ze stosowania w Europie w związku z obawami dotyczącymi ich wpływu na pszczoły. To, czy powrócą one na rynek (czy też wycofane zostaną również pozostałe dwa), jeszcze się okaże. Niektóre z neonicinoidów mogą mieć mniejszy wpływ na niektórych naturalnych wrogów, ale nadal odradzamy ich stosowanie.

Więcej informacji na temat chemicznej kontroli mszyc różanych można znaleźć w Royal Horticultural Society.

które mszyce niszczą róże?

około trzydziestu gatunków mszyc żywi się uprawianymi różami na całym świecie, z czego dwanaście znanych jest w Wielkiej Brytanii. Spośród różnych gatunków mszyc najczęściej występuje mszyca różowa (Macrosiphum rosae). Są zielone lub różowe z długimi czarnymi syfunkulami. Zdjęcie poniżej przedstawia dużą kolonię mszycy różanej. Białe jajo na zdjęciu zostało złożone przez muchę-wylęgnie się, aby dać larwę, która będzie żywiła się mszycami różanymi.

mszyca różowa jest najbardziej szkodliwa nie tylko dlatego, że jest najliczniejszym gatunkiem, ale także dlatego, że żywi się młodymi pędami. Młode pędy i rozwijające się pąki kwiatowe stają się skręcone i wypaczone w wyniku działania trawiennego wstrzykniętej śliny (patrz zdjęcie poniżej).

kolejnym powodem, dla którego Macrosiphum rosae powoduje najwięcej szkód, jest to, że może pozostać na róży przez cały rok (chociaż niektóre skrzydlate formy mogą migrować do ich alternatywnego, letniego, gospodarzy herbaty i waleriany). Niektóre inne gatunki, takie jak mszyca różowa (Metopolophium dirhodum, zwróć uwagę na Jasną syfunkulię na zdjęciu poniżej) mają tylko krótki pobyt na róży wiosną. Stąd jest to dość bezcelowa próba kontrolowania tego gatunku – wszystkie młode rozwijają skrzydła i opuszczają z własnej woli, aby skolonizować trawy!

ale zignoruj niektóre inne gatunki na własne ryzyko! Po pospolitej mszycy różowej najbardziej szkodliwa jest prawdopodobnie mszyca różowa włochata (Chaetosiphon tetrarhodum), szczególnie pospolita na różach rugosa. Liczby tej bardzo małej mszycy gromadzą się w końcówkach pędów i na pąkach (patrz zdjęcie poniżej), gdzie często są pomijane, dopóki nie zostaną wyrządzone szkody.

należy również wspomnieć o największym gatunku mszycy na róży, giant rose stem aphid Maculolachnus submacula (patrz zdjęcie poniżej). Jest to bardzo rzadkie, występuje tylko na starych różach ogrodowych i jest spotykane przez mrówki. Są one tak niezwykłym widokiem (przynajmniej w Wielkiej Brytanii), że należy je zachować ze względu na ich wartość bioróżnorodności i uznać za cechę ogrodu, a nie rozpylać w zapomnienie. Są mało prawdopodobne, aby były wystarczająco liczne, aby spowodować jakiekolwiek szkody dla róży.

Identyfikacja mszycy różanej

absolutnie każdy gatunek mszycy może przypadkowo wylądować na roślinie różanej, ale bardzo niewiele gatunków jest przystosowanych do przetrwania na różach. Zdecydowana większość przypadkowych przybyszów umiera dość szybko. „Mszyce różane” są zatem definiowane jako te gatunki, o których wiadomo, że wytwarzają żywotne kolonie. Rodzaj Rosa zawiera prawdopodobnie sto gatunków, plus ich mieszańce-skupimy się tylko na uprawianych odmianach róż 'ogrodowych’.

Blackman & Eastop (1984) wymienia 32 gatunki mszyc jako żerujące na uprawianych „różach” na całym świecie (Pokaż listę światową) i podaje formalne klucze identyfikacyjne. Wykaz ten nie obejmuje mszyc występujących na gatunkach róż, które normalnie nie są uprawiane. Nie obejmuje również gatunków mszyc, które przypadkowo znajdują się na róży, ale nie produkują żywotnej Kolonii (w przeciwnym razie może istnieć potencjalnie ponad 5000 gatunków mszyc różowych). Spośród 32 gatunków mszyc Baker (2015) wymienia 12 jako występujące w Wielkiej Brytanii (Pokaż listę brytyjską).

poniżej 11 gatunków to te, które sami znaleźliśmy, wymienione w szorstkiej kolejności liczebności na róży. W Wielkiej Brytanii i pozostałej części północnej Europy Rhodobium porosum występuje tylko na różach w szklarniach.

mszyca Różowa gatunki

Macrosiphum rosae (mszyca Różowa)

Dorosłe Macrosiphum rosae apterae są zielone lub głęboko różowe do czerwono-brązowego. Czułki i czasami głowa są ciemne, podobnie jak końce kości piszczelowej i udowej. Brzuch może, ale nie musi, mieć małe scleryty marginalne i scleryty przedoczodołowe. Sifunculi są Czarne i wygięte na zewnątrz i są siateczkowane na wierzchołku 10-17%. Są około 0,27-0,41 razy długości ciała i 1,9-2,4 razy długości ogona. Ogon jest bladożółty. Dorosła aptera Macrosiphum rosae ma 1,7-3,6 mm długości.

Macrosiphum rosae alatae mają widoczne czarne skleroty wzdłuż boków brzucha. Mają również zielone i czerwone formy barwne. Niedojrzałe są podobne w wyglądzie do dorosłych apterae, ale ogonek nie jest rozwinięty, a syfunkuły są mroczne, a nie Czarne.

mszyca różowa Zwykle zimuje w stadium jajowym na krzewach róży (jej głównym żywicielu), chociaż w łagodnych zimach niektóre dorosłe osobniki mogą nadal rozmnażać się partenogenetycznie. Wiosną kolonizują Młode odmiany róży i produkują duże ilości alatów. Te przeważnie migrują do drugorzędnych żywicieli, herbacianych (Dipsaceae) i walerianowatych (Valerianaceae). Jednak kolonie można znaleźć przez całe lato na róży i gatunek ten jest ważnym szkodnikiem ogrodniczym. Macrosiphum rosae ma światową dystrybucję.

Czytaj więcej…

Macrosiphum euphorbiae (mszyca ziemniaczana)

macrosiphum euphorbiae apterae są albo zielone z ciemniejszym zielonym podłużnym paskiem lub czerwonym (patrz zdjęcia poniżej) i często raczej błyszczące. Ich oczy są czerwonawe, a czułki ciemniejsze w kierunku czubków. Ich kość udowa jest brązowawa i raczej blada, a wierzchołki nie są ciemne lub tylko nieznacznie tak. Szypułki są Blade, czasami z końcówkami ciemniejszymi, ale nie tak ciemnymi jak końcówki piszczeli. Są one siateczkowane na wierzchołku 13-20% i są 1,7-2,2 razy długości ogona. Ogon jest raczej spiczasty i nie zwężony. Długość ciała Macrosiphum euphorbiae apterae wynosi 2,0-4,0 mm.

alate ma bladozielone do żółto-brązowych płatów piersiowych, z tylko czułkami i syfunkulami zauważalnie ciemniejszymi niż u apterae.

mszyca ziemniaczana jest gatunkiem pospolitym i bardzo wielogatunkowym. Często jest szkodnikiem na różnych uprawach, takich jak ziemniak (Solanum tuberosum), sałata (Lactuca sativa) i buraki (Beta vulgaris), a także na licznych ozdobach ogrodowych. Macrosiphum euphorbiae jest wektorem około stu wirusów roślinnych. Gatunek pochodzi z północno-wschodnich Stanów Zjednoczonych, gdzie wytwarza formy płciowe, a gospodarzem jest róża (Rosa) jako jej główny żywiciel. Gdzie indziej Zwykle zimuje jako viviparae. Liczebność mszyc gwałtownie wzrasta od wczesnej wiosny, a alaty rozprzestrzeniają inwazję na inne rośliny. Jest to szczególny problem w nieogrzewanych szklarniach. Macrosiphum euphorbiae został wprowadzony do Europy około 1917 roku i jest obecnie kosmopolityczny.

Czytaj więcej…

Chaetosiphon tetrarhodum (Hairy rose aphid)

Chaetosiphon tetrarhodum adult apterae (patrz pierwsze zdjęcie poniżej) są jasnozielone do żółto-zielonych lub czasami czerwonawe. Głowa jest raczej gładka z kilkoma, jeśli w ogóle, szpiczastymi. Czułki są krótkie, tylko 0,6-0,8 razy dłuższe od ciała. Naskórek grzbietowy jest gęsto pokryty płaskimi brodawkami, nadając mu pomarszczony wygląd. Każdy segment brzuszny nosi 5 par włosków kapitalnych. Ich siphunculi są 1,1 do 2,5 razy dłuższe niż ogona. Długość ciała Chaetosiphon tetrarhodum wynosi 0,7-2.1 mm, z najmniejszymi osobnikami w połowie lata.

wiwipary skrzydlate (patrz drugie zdjęcie powyżej) mają ciemną głowę i klatkę piersiową, czarną centralną łatę na brzuchu i ciemne żyły skrzydłowe. Jajowate są ciemno oliwkowozielone, a samce małe i ciemne.

Chaetosiphon tetrarhodum występuje na różnych gatunkach róż, zwłaszcza róży japońskiej (Rosa rugosa). Wiosną można je znaleźć na końcówkach pędów, młodych liściach i rozwijających się kwiatach. W późniejszym okresie roku można je znaleźć pojedynczo lub w małych grupach na spodach dojrzałych liści. Formy płciowe występują jesienią. Dystrybucja Chaetosiphon tetrarhodum jest na całym świecie.

Czytaj więcej…

Metopolophium dirhodum (mszyca Różowa)

dorosłe apterae Metopolophium dirhodum są średniej wielkości mszycami wrzecionowatymi, które wahają się od zielonego do żółtawozielonego, z jaśniejszym zielonym podłużnym środkowym pasem grzbietowym (patrz zdjęcia poniżej). Anteny mają około 0.75-krotność długości ciała i są głównie blade od wierzchołków segmentów III-V oraz części segmentu 6, które są ciemniejsze lub czarne. Syfunkuły są długie i blade, z lekko ciemnymi końcówkami. Ogon jest blady. Długość ciała Metopolophium dirhodum apterae wynosi 1,6-2,9 mm.

alate jest zielony i nie ma ciemnych oznaczeń.

żywiciel mszycy różowej zmienia się od róży (Rosa sp) jako żywiciela pierwotnego wiosną i wczesnym latem do zbóż i traw, zwłaszcza pszenicy, jęczmienia i kukurydzy, jako żywiciela wtórnego. W łagodne zimy mogą zimować na trawach partenogenetycznie. Duże ilości zbóż mogą powodować szkody gospodarcze. Metopolophium dirhodum przenosi także wirusa mozaiki kukurydzy i wirusa żółtego karła jęczmienia.

Czytaj więcej…

Myzaphis rosarum (pomniejsza mszyca różowa)

bezskrzydłe dorosłe Myzaphis rosarum są żółto-zielone do zielonego. Naskórek grzbietowy jest cały osadzony. Szypułki są dość długie, lekko nabrzmiałe i ciemnoskrzydłe. Ogon jest długi i rzucający się w oczy. Długość ciała Myzaphis rosarum wynosi 1,2-2,4 mm.

Alaty mają ciemną centralną łatę na grzbiecie brzusznym.

Myzaphis rosarum żyje przez cały rok na dziko rosnących różach, zwłaszcza pnączach, a często także na krzewiastych gatunkach Potentilla. Nie ma hosta alternatywa. Żywią się głównie wzdłuż środkowych żeber na górnej i dolnej stronie młodych liści. W Europie w listopadzie pojawiają się jajowate i małe ciemnopurpurowe samce. Myzaphis rosarum pochodzi z Europy, ale obecnie jest prawie kosmopolityczny.

Czytaj więcej…

Longicaudus trirhodus (mszyca różowozielona)

Longicaudus trirhodus jest jasnożółto – zieloną mszycą z nieco ciemniejszymi zielonymi poprzecznymi pasami na brzuchu. Trzeci segment antenowy jest wyraźnie dłuższy niż całkowita długość czwartego i piątego segmentu antenowego. Szypułki są stożkowate z ciemnymi końcówkami i znacznie krótsze od ogona. Ogona jest długi i palec-jak znacznie dłużej niż jego podstawowej szerokości. Długość ciała Longicaudus trirhodus apterae wynosi 2,0-2,7 mm. Forma skrzydlata ma nieregularny czarny ślad na brzuchu.

skrzydlata forma (drugie zdjęcie powyżej) ma nieregularny czarny ślad na brzuchu.

żywiciel mszycy różowo – kolumbowej na przemian z różą (Rosa spp.) zimą i wiosną do uprawy kolumbowca („Aquilegia vulgaris”) i Łęgu łąkowego („Thalictrum”) latem. Longicaudus trirhodus występuje w Europie, Azji i Ameryce Północnej.

Czytaj więcej…

Maculolachnus submacula (mszyca różowa)

Maculolachnus submacula apterae (patrz pierwsze zdjęcie poniżej) są żółtobrązowe, czerwonobrązowe lub ciemnobrązowe. Grzbiet ma wiele drobnych włosków umieszczonych na małych skleroitach. Ich Ciemnobrązowe czułki są mniej więcej o połowę długości ciała, a końcówka antenowa jest mniejsza niż 0,25 razy długości podstawy szóstego segmentu antenowego. Nogi Maculolachnus submacula są ciemnobrązowe, z wyjątkiem podstawy kości udowej i środkowej części kości piszczelowej. Włos na kości piszczelowej ma około połowy średnicy kości piszczelowej. Szyszki szyszkowe są ciemne, a także mają wiele włosków. Długość ciała Maculolachnus submacula wynosi 2,7-3,8 mm.

Maculolachnus submacula żywi się gatunkami róż, w tym uprawianymi różami. Większość roku żywią się łodygami w pobliżu Ziemi, ale latem przenoszą się do korzeni powierzchniowych. Kolonie są pielęgnowane przez mrówki, które często pokrywają mszyce cząstkami gleby. Nie przyjmują zastępców. Samce jajowate i apteczne występują we wrześniu-październiku. Maculolachnus submacula są rozpowszechnione w całej Europie na wschód do Ukrainy, Kazachstanu i Indii.

Czytaj więcej…

Myzaphis bucktoni (mszyca Różowa)

Dorosłe myzaphis bucktoni apterae są bladożółte do bladozielonych z ciemnobrązową głową i ciemnobrązowymi oznaczeniami grzbietowymi. Oznaczenia składają się z dwóch dużych brązowych plam na pronotum i sparowanych brązowych pasów rozciągających się od mezotorax do podstawy ogona zbiegających się między syfunkulami (patrz pierwsze zdjęcie poniżej). Podobnie jak inne gatunki Myzaphis, Myzaphis bucktoni jest małą mszycą: ich długość ciała waha się od 1.0-1, 9 mm

ich alaty mają raczej słabą pigmentację brzucha, która zwykle jest podzielona między sobą w linii środkowej, z dużymi sklerotami marginalnymi na tergitach brzusznych 2-4 (patrz drugie zdjęcie powyżej). Włosy z przodu głowy są widoczne. Czułki Myzaphis bucktoni alates mają 14-32 wtórne rhinaria na trzecim segmencie antenowym, ale żadnego na czwartym.

gatunek ten występuje głównie na dziko rosnących różach, takich jak róża psia (Rosa canina) i róża puchowa (Rosa tomentosa). Myzaphis bucktoni apterae żywi się rozproszonymi wzdłuż środkowych żeber górnych boków liści. Formy płciowe występują w listopadzie. Samce są małe, ciemne, bezskrzydłe i bardzo aktywne. Oviparae są bladozielone oliwkowozielone i mają silnie spuchnięte tylne piszczele. Myzaphis bucktoni występuje w całej Europie, Azji i Ameryce Północnej.

Czytaj więcej…

Wahlgreniella nervata (mszyca różowo – truskawkowa)

wahlgreniella nervata apterae są wrzecionowate i żółtawe lub zielone (patrz poniżej pierwsze zdjęcie), czasami nakrapiane z czerwonawym przednimi (patrz poniżej drugie zdjęcie). Kość udowa nie ma wyraźnie ciemnych wierzchołków. Ich syfunkuły są nieco spuchnięte, raczej symetrycznie wokół ich wewnętrznej i zewnętrznej twarzy, mają ciemne końcówki i mały kołnierz. Skrzydlate viviparae Wahlgreniella nervata mają ZIELONY BRZUCH z różnorodnie rozwiniętymi ciemnymi poprzecznymi pasmami grzbietowymi, czasami łączącymi się w nieregularną łatkę.

wyróżnia się dwa podgatunki:

• Wahlgreniella nervata arbuti
  wierzchołkowy segment rostrum jest dłuższy niż 1,3 Raza długości segmentu drugiego Tarsu tylnego.Żywe mszyce są bladożółte do jasnożółtozielonych. Na Arbutus (drzewo truskawkowe) i Arctostaphylos (manzanitas i borówki).
• Wahlgreniella nervata nervata
  wierzchołkowy segment rostrum jest krótszy niż 1,3-krotność długości segmentu drugiego tylnego stępu.Żywe mszyce są tępo zielonkawe, czasami z ciemnoczerwonym cętkowaniem przednio. Na róży (Rosa), ale w kulturze może żyć na Arbutus.

w Ameryce Północnej Wahlgreniella nervata najwyraźniej żywiciel zmienia się między różą (Rosa) a roślinami wrzosowatymi (głównie drzewo truskawkowe, Arbutus), chociaż alternacja żywiciela nie została jeszcze zweryfikowana eksperymentalnie. Populacje partenogenetyczne na Rosach i Arbutus zostały wprowadzone do Europy i traktowane są jako osobne podgatunki. Wahlgreniella nervata jest uważana za gatunek inwazyjny, który został zgłoszony z róży Adamaszkowej w Turcji (Barjadze, 2011) i jako nowy szkodnik róży w Indiach (Joshi et al., 2014).

Czytaj więcej…

Sitobion fragariae (mszyca jeżycowo – trawna)

Sitobion fragariae aptera jest wrzecionowaty i brudnozielony, z małymi brązowymi sklerotami międzysegmentalnymi na grzbiecie brzusznym. Ich czułki są mniej więcej tej samej długości co ciało, a segmenty bazalne jaśniejsze od reszty. Siphunculi są około dwa razy tak długo, jak blady spiczasty ogona i są zwykle całkowicie czarne, chociaż mogą mieć jaśniejsze podstawy na głównym żywicielu. W porównaniu do Macrosiphum funestum, syfunkulusy są krótsze w stosunku do ogona (tylko 2×) i są ciemniejsze lub czarne. Długość ciała Sitobion fragariae apterae wynosi 1,6-3,0 mm.

nosiciel mszycy jeżyn (Rubus fruticosus agg.) i okazjonalnie inne Rosaceae do traw (Poaceae), zwłaszcza Holcus spp. i niektóre Sedymenty (Carex spp.). Jaja Sitobion fragariae wykluwają się wiosną, a Młode nimfy żywią się pękającymi pąkami. Kolonie budują się, a latem alaty migrują do zbóż i traw. Jesienią następuje migracja powrotna.

Czytaj więcej…

Chaetosiphon fragaefolii (mszyca truskawkowa)

dorosłe aptery Chaetosiphon fragaefolii (patrz pierwsze zdjęcie poniżej) są przezroczyste od żółtawobiałego do jasnozielonawożółtego. Głowa ma kolce, a czułki są 0,9-1,1 razy dłuższe od ciała. Trzeci segment antenowy ma 2-7 grubych, kapitalnych włosków. Ciało pokryte jest widocznymi włoskami kapitalnymi. Siphunculi są długie i cylindryczne i 2,2-3,3 razy dłuższe niż dość krótki ogona. Długość ciała Chaetosiphon fragaefolii apterae wynosi tylko 0,9-1,8 mm.

alate (patrz drugie zdjęcie powyżej) ma głowę i płaty piersiowe czarne, a brzuch blado zielonkawo biały z brązowo-czarną łatą grzbietową. Długość ciała wynosi 1,3-1,8 mm.

Chaetosiphon fragaefolii żywi się truskawkami (Fragaria spp.) zwłaszcza odmiany uprawiane, a sporadycznie na różach („Rosa”). W Europie jest rzadko spotykany na dzikiej truskawce (Fragaria vesca), ale w Ameryce występuje na niektórych dzikich gatunkach, takich jak Chilijska truskawka (Fragaria chiloensis). Chaetosiphon fragaefolii zwykle występuje na nowych pędach, w koronie i blisko żył na spodniej stronie listków. Gatunek zimuje głównie jako formy partenogenetyczne, chociaż formy płciowe zostały wytworzone w laboratorium.

Czytaj więcej…

Postscriptum – niezwykle rzadka mszyca na różach ogrodowych

być może zauważyliście, że nie wspomnieliśmy o tym, co jest prawdopodobnie najbardziej zauważalne w ogrodach – „mszyca czarna fasola” (Aphis fabae). Mszyca ta jest notorycznie wielogatunkowym gatunkiem, występującym w obfitości na bób i wiele innych roślin ogrodowych. Aphis fabae odnotowano na psie róży (Rosa canina), ale do niedawna nigdy nie były rejestrowane na uprawianych różach. Niemniej jednak, zaobserwowaliśmy jedną bardzo małą kolonię raczej chorych mszyc czarnej fasoli (pokazane poniżej) na uprawianej róży rugozowej (Rosa rugosa). Dorosły Na zdjęciu był skurczony i prawdopodobnie nie był w stanie się rozmnażać.

według naszej wiedzy jest to pierwszy i jedyny taki zapis i potwierdza wniosek, że na różach uprawianych, w przeciwieństwie do fasoli, Aphis fabae jest bardzo rzadką mszycą (zobacz naszą stronę na temat mszyc rzadkich), chociaż mszyca ta z pewnością nie wymaga żadnych wysiłków ochronnych!

Przydatne linki

• Barjadze, S. et al. (2014). Note on Wahlgreniella nervata (Gillette, 1908) (Hemiptera: Aphididae): a new pest of Damask rose in Turkey. Phytoparasitica 39 (3), 239-241. Abstrakt
• Blackman, R. L. & Eastop, V. F. (1984). Mszyce na światowych uprawach: przewodnik identyfikacji. J. Wiley & Sons, Chichester, UK.
• Ferran, A. et al. (1996). Zastosowanie larw Harmonia axyridis (Coleoptera: Coccinellidae) przeciwko Macrosiphum rosae (Hemiptera: Sternorhyncha: Aphididae)na krzewach róż. European Journal of Entomology 93, 59-67.Pełny tekst
• Frere, I. et al. (2007). Pozorna konkurencja czy pozorny mutualizm? Analiza wpływu zarządzania pasem krzewów róży na populację mszyc na polu pszenicy. Journal of Applied Entomology 131 (4), 275-283. Streszczenie
• Hamalainen, M. (1977). Kontrola mszyc na słodkiej papryce, chryzantemach i różach w małych szklarniach z wykorzystaniem biedronek Coccinella septempunctata i Adalia bipunctata (col., Coccinellidae). Annales Agriculturae Fenniae 16, 117-131. Pełny tekst
• Hickman, J. M.& Wratten, S. D. (1996). Zastosowanie pasków Phelia tanacetifolia w celu zwiększenia biologicznej kontroli mszyc przez larwy muchówek na polach zbożowych. Journal of Economic Entomology 108 (5), 832-840. Streszczenie
• Joshi, S. et al. (2014). Wahlgreniella nervata (Hemiptera: Aphididae) – nowy szkodnik róży w Indiach. Florida Entomologist 97 (1), 162-167. Pełny tekst
• Markkula, M. et al. (1979). Midge aphidoletes aphidimyza (Diptera, Cecidomyiidae) i jego zastosowanie w biologicznej kontroli mszyc. Annales Entomologici Fennici 45 (4), 89-98. Streszczenie
• Natskova, V. (1973). Wpływ pasożytniczych i drapieżnych owadów na mszycę różaną Macrosiphum rosae L. (Homoptera, Aphididae). Gradinarska i Lozarska Nauka 10(8), 115-122. Streszczenie
• Sadeghi, H. & Gilbert, F. (2000). Owłosienie preferencje mszyc przełykowych. Ekologiczna 25 Lok. 1, 91-100 Streszczenie
• Snyder, W. E. et al. (2004). Uzupełniająca biokontrola mszyc przez chrząszcza Biedronkę Harmonia axyridis i parazytoid Aphelinus asychis na różach szklarniowych. Biological Control 30 (2), 229-235. Pełny tekst
• Waterhouse, D. F.& Sands, D. P. A. (2001). Klasyczna biologiczna Kontrola stawonogów w Australii. CSIRO Entomology Canberra 2001. Pełny tekst